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      치과용 순수 티타니움 임플란트의 표면 특성에 따른 뼈모세포의 초기 분화와 부착 = Early Differentiation and Attachment of Osteoblasts to Different Surface Roughness of Dental Pure Titanium Implant

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      https://www.riss.kr/link?id=A77005072

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      국문 초록 (Abstract)

      치과용 임플란트에서 뼈와 임플란트 표면 사이에 뼈 형성에 의한 긴밀한 초기 접촉이 성공적인 임플란트를 위하여 중요하다. 임플란트 주위에 뼈가 형성되는 과정에는 재료의 성질 외에 임플란트 자체의 표면 특성, 즉 표면거칠기 및 형태는 세포 반응에 영향을 미친다. 뼈모세포 또는 뼈모세포계열의 세포와 임플란트 표면과의 특이 반응은 궁극적으로 세포 표현형의 변화를 수반하게 된다. 본 연구는 뼈모세포주에서 서로 거칠기를 달리하는 순수 티타니움 임플란트 재료에서 세포 분화와 형태 변화를 세포증식법, 주사전자현미경 및 중합효소 반응을 이용하여 구명하고자 시도되었다.
      배양접시의 polystylene well 표면과 매끈한표면 티타니움(smooth surface titanium)과 거친표면 티타니움(rough
      surface titanium)의 표면거칠기 Ra 값은 각각 0.16±0.03 μm, 0.24±0.04 μm, 2.93±0.21 μm로 각 군간에 유의하
      게 차이가 있었다. 배양 18시간과 5일 모두에서 거친표면 티타니움의 세포 수는 매끈한표면 티타니움에 비하여 유의하게 세포수가 적었다(p⁄0.01). 주사전자현미경적 소견에서 매끈한표면 티타니움의 세포는 방추형으로 거친표면 티타니움에 비하여 세포 경계가 매끈하고 티타니움 표면에 납작하게 부착되어 있었다. 거친표면 티타니움의 세포는 매끈한표면 티타니움에 비하여 세포경계가 비교적 거칠고 외형은 티타니움 표면의 돌출부와 함몰부 사이를 따라 굴곡을 보였으며, 세포 윤곽이 비교적 뚜렷하였다. 검사한 유전자 중 배양 18시간에서 erk2의 발현이, 배양 5일에서 erk1과 type I collagen 유전자의 발현이 거친표면 티타니움에서 증가되어 있었다(p⁄0.05).
      이상의 결과는 매끈한표면 티타니움(Ra=0.24±0.04 μm)에 비교하여 거친표면 티타니움(Ra=2.93±0.21 μm)에서 세포는 증식보다는 분화를 보이며, 이 과정에 erk1과 erk2가 관여할 것으로 사료된다.
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      치과용 임플란트에서 뼈와 임플란트 표면 사이에 뼈 형성에 의한 긴밀한 초기 접촉이 성공적인 임플란트를 위하여 중요하다. 임플란트 주위에 뼈가 형성되는 과정에는 재료의 성질 외에 임...

      치과용 임플란트에서 뼈와 임플란트 표면 사이에 뼈 형성에 의한 긴밀한 초기 접촉이 성공적인 임플란트를 위하여 중요하다. 임플란트 주위에 뼈가 형성되는 과정에는 재료의 성질 외에 임플란트 자체의 표면 특성, 즉 표면거칠기 및 형태는 세포 반응에 영향을 미친다. 뼈모세포 또는 뼈모세포계열의 세포와 임플란트 표면과의 특이 반응은 궁극적으로 세포 표현형의 변화를 수반하게 된다. 본 연구는 뼈모세포주에서 서로 거칠기를 달리하는 순수 티타니움 임플란트 재료에서 세포 분화와 형태 변화를 세포증식법, 주사전자현미경 및 중합효소 반응을 이용하여 구명하고자 시도되었다.
      배양접시의 polystylene well 표면과 매끈한표면 티타니움(smooth surface titanium)과 거친표면 티타니움(rough
      surface titanium)의 표면거칠기 Ra 값은 각각 0.16±0.03 μm, 0.24±0.04 μm, 2.93±0.21 μm로 각 군간에 유의하
      게 차이가 있었다. 배양 18시간과 5일 모두에서 거친표면 티타니움의 세포 수는 매끈한표면 티타니움에 비하여 유의하게 세포수가 적었다(p⁄0.01). 주사전자현미경적 소견에서 매끈한표면 티타니움의 세포는 방추형으로 거친표면 티타니움에 비하여 세포 경계가 매끈하고 티타니움 표면에 납작하게 부착되어 있었다. 거친표면 티타니움의 세포는 매끈한표면 티타니움에 비하여 세포경계가 비교적 거칠고 외형은 티타니움 표면의 돌출부와 함몰부 사이를 따라 굴곡을 보였으며, 세포 윤곽이 비교적 뚜렷하였다. 검사한 유전자 중 배양 18시간에서 erk2의 발현이, 배양 5일에서 erk1과 type I collagen 유전자의 발현이 거친표면 티타니움에서 증가되어 있었다(p⁄0.05).
      이상의 결과는 매끈한표면 티타니움(Ra=0.24±0.04 μm)에 비교하여 거친표면 티타니움(Ra=2.93±0.21 μm)에서 세포는 증식보다는 분화를 보이며, 이 과정에 erk1과 erk2가 관여할 것으로 사료된다.

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      다국어 초록 (Multilingual Abstract)

      Early bone formation and close contact between dental implant and tissue bed are important for successful osseointegrated dental implants. Surface characteristics of implant materials such as roughness and topography have effects on peri-implant tissue reaction in addition to chemical properties of dental implants. The
      specific reactions of osteoblasts or their lineages to implant surface accompany changes of their phenotype. This study was undertaken to unravel cell differentiation and functional changes, responding to different implant surfaces characteristics. Cell proliferation, scanning electron microscopy and RT-PCR analyses for COX-2, ERK-1, ERK-2, Type I collagen, β-catenin, PLC-γ2, β-actin were carried using MG 63 preosteoblastic cells at 18 hours and 5 days of culture in vitro.
      The number of attached cells on rough surface titanium (Ra=2.93±0.21 μm) was less than that on smooth surface
      titanium (Ra=0.24±0.04 μm) at both 18 hours and 5 days of culture (p⁄0.01). Cells on smooth surface titanium were flat and spindle-shaped and their margin was smooth. In contrast, cells on rough surface titanium seemed to be thicker and shaped following pits and projections of the surface and their margin was irregular with many processes. At 18 hours of culture, erk2 mRNA expression in rough surface titanium was more than that in smooth. Similarly at 5 days of culture, erk1 and collagen I transcriptions were more than those of smooth surface titanium (p⁄0.01 and p⁄0.05 respectively).
      These results suggest that rough surface titanium directs preosteoblasts toward differentiation rather than proliferation, comparing smooth surface titanium, and genes such as erk1 and erk2 would be involved in the cellular changes.
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      Early bone formation and close contact between dental implant and tissue bed are important for successful osseointegrated dental implants. Surface characteristics of implant materials such as roughness and topography have effects on peri-implant tissu...

      Early bone formation and close contact between dental implant and tissue bed are important for successful osseointegrated dental implants. Surface characteristics of implant materials such as roughness and topography have effects on peri-implant tissue reaction in addition to chemical properties of dental implants. The
      specific reactions of osteoblasts or their lineages to implant surface accompany changes of their phenotype. This study was undertaken to unravel cell differentiation and functional changes, responding to different implant surfaces characteristics. Cell proliferation, scanning electron microscopy and RT-PCR analyses for COX-2, ERK-1, ERK-2, Type I collagen, β-catenin, PLC-γ2, β-actin were carried using MG 63 preosteoblastic cells at 18 hours and 5 days of culture in vitro.
      The number of attached cells on rough surface titanium (Ra=2.93±0.21 μm) was less than that on smooth surface
      titanium (Ra=0.24±0.04 μm) at both 18 hours and 5 days of culture (p⁄0.01). Cells on smooth surface titanium were flat and spindle-shaped and their margin was smooth. In contrast, cells on rough surface titanium seemed to be thicker and shaped following pits and projections of the surface and their margin was irregular with many processes. At 18 hours of culture, erk2 mRNA expression in rough surface titanium was more than that in smooth. Similarly at 5 days of culture, erk1 and collagen I transcriptions were more than those of smooth surface titanium (p⁄0.01 and p⁄0.05 respectively).
      These results suggest that rough surface titanium directs preosteoblasts toward differentiation rather than proliferation, comparing smooth surface titanium, and genes such as erk1 and erk2 would be involved in the cellular changes.

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      참고문헌 (Reference)

      1 "response of rat osteoblast-like cells to microstructuredmodel surfaces in vitro" 24 : 649-654, 2003

      2 "an in vitro model of boneimplantinteractions" 582-585, 1994

      3 "Vascular endothelial growth factor and platelet-derived endothelial cell growth factor expression are implicated in the angiogenesis of endometrial cancer" 36 : 68-73, 2000

      4 "Uptake and biodistribution of 99mtechnetium methylene-[32P] diphosphonate during endosteal healing around titanium, stainless steel and hydroxyapatite implants in rat tibial bone" 16 : 1373-1380, 1995

      5 "Underlying mechanisms at the bone biomaterialinterface" 340-347, 1994

      6 "Type I collagen productionby osteoblast-like cells in contact with differentbioactive glasses" 64 : 189-195, 2003

      7 "Titanium surface topography alters cell shape and modulates bone morphogenic protein 2 expression in the J774A.1 macrophage cell line." 1 : 207-216, 2003

      8 "Titanium surface roughness alters responsiveness of MG63 osteoblast-like cells to 1α,25-(OH)2D3." 39 : 77-85, 1998

      9 "The effects of the surface topographyof micromachined titanium substrata on cell behavior invitro and in vivo" 121 : 49-57, 1999

      10 "The effects of micromachinedsurfaces on formation of bonelike tissue on subcutaneousimplants as assessed by radiography and computerimage processing" 34 : 279-290, 1997

      1 "response of rat osteoblast-like cells to microstructuredmodel surfaces in vitro" 24 : 649-654, 2003

      2 "an in vitro model of boneimplantinteractions" 582-585, 1994

      3 "Vascular endothelial growth factor and platelet-derived endothelial cell growth factor expression are implicated in the angiogenesis of endometrial cancer" 36 : 68-73, 2000

      4 "Uptake and biodistribution of 99mtechnetium methylene-[32P] diphosphonate during endosteal healing around titanium, stainless steel and hydroxyapatite implants in rat tibial bone" 16 : 1373-1380, 1995

      5 "Underlying mechanisms at the bone biomaterialinterface" 340-347, 1994

      6 "Type I collagen productionby osteoblast-like cells in contact with differentbioactive glasses" 64 : 189-195, 2003

      7 "Titanium surface topography alters cell shape and modulates bone morphogenic protein 2 expression in the J774A.1 macrophage cell line." 1 : 207-216, 2003

      8 "Titanium surface roughness alters responsiveness of MG63 osteoblast-like cells to 1α,25-(OH)2D3." 39 : 77-85, 1998

      9 "The effects of the surface topographyof micromachined titanium substrata on cell behavior invitro and in vivo" 121 : 49-57, 1999

      10 "The effects of micromachinedsurfaces on formation of bonelike tissue on subcutaneousimplants as assessed by radiography and computerimage processing" 34 : 279-290, 1997

      11 "Sustainedactivation of the mitogen activated protein kinasecascade may be required for differentiation of P12 cells comparison of the effects of nerve growth factor and epidermalgrowth factor" 351-355, 1992

      12 "Surface roughness modulates thelocal production of growth factors and cytokines by osteoblast-like MG63 cells" 32 : 55-63, 1996

      13 "Specificity of receptor kinase signalling: transient versus sustained extracellular signal-regulated kinase activation." 80 : 179-185, 1995

      14 "Significant role of adhesion properties of primary osteoblast-like cells in early adhesion events for chondroitin sulfate and dermatan sulfate surface" 47 : 345-352, 1999

      15 "Response of MG63 osteoblastlikecells to titanium and titanium alloy is dependent onsurface roughness and composition" 19 : 2219-2232, 1998

      16 "Regulation of MMP-9 (92 kDa type IV collagenase/gelatinase B) expression in stromal cells of human giant cell tumor of bone" 15 : 400-409, 1997

      17 "Qualitative and quantitative study of humanosteoblast adhesion on materials with various surfaceroughnesses" 49 : 155-166, 2000

      18 "Molecular cloningand characterization of the human p44 mitogen-activatedprotein kinase gene" 50 : 69-78, 1998

      19 "Modulation of matrix vesicleenzyme activity and phosphatidylserine content by ceramicimplant materials during endosteal bone healing" 429-437, 1992

      20 "Mechanism involved in osteoblast response toimplant surface morphology" 31 : 357-371, 2001

      21 "Lineage-specificdefect in gene expression in human platelet phospholipaseC-β2 deficiency" 99 (99): 905-911, 2002

      22 "Interleukin-6-type cytokine signalling through the gp130 /Jak/STAT pathway" 334 : 297-314, 1998

      23 "Interface shear strength of titanium implants with a sandblasted and acid-etched surface: a biomechanical study in the maxilla of miniature pigs." 45 : 75-83, 1999

      24 "Influence of surface characteristics on bone integrationof titanium implants A histomorphometric study in miniaturepigs" Steinemann S 889-902, 1991

      25 "In vitro modeling of the bone/implant interface" 245 : 426-445, 1996

      26 "Implant surface characterisation modulate differentiationbehavior of cells in the osteoblastic lineage" 13 : 38-48, 1999

      27 "Growth factor signalling by receptortyrosine kinase" 383-9 391, 1992

      28 "Generalizations regarding the process and phenomenon of osseointegration. Part II. In vitro studies" 13 : 163-174, 1998

      29 "Generalizations regarding the process and phenomenon of osseointegration. Part I. In vivo studies." 13 : 17-29, 1998

      30 "Expression of cadherins and catenins in paired tumor and non-neoplastic primary prostate cultures and corresponding prostectomy specimens" 28 : 308-315, 2000

      31 "Expression of COX-1 and COX-2 mRNAs in atherosclerotic plaques." 37 : 925-929, 2002

      32 "Effects of combiningtransforming growth factor β and 1 25-dihydroxyvitamineD3 on differentiation of a human osteosarcoma" 8943-63 8949, 1992

      33 "ERKMAPK activity as a determinant of tumor growth and dormancy; Regulation by p38SAPK." 63 : 1684-1695, 2003

      34 "EGF triggers neuronal differentiation of PC12 cells thatoverexpress the EGF receptor" 694-701, 1994

      35 "Constitutive activation of extracellular signal-regulated kinase in human acute leukemias: combined role of activation of MEK, hypertension of extracellular signal-regulated kinase, and downregulation of a phosphatase, PAC 1" 93 (93): 3893-3899, 1999

      36 "Cell and soft tissue interactions with methyl- and hydroxylterminated alkane thiols on gold surfaces" 18 : 1059-1068, 1997

      37 "Cadherins in cancer implications for invasion andmetastasis" Curr Opin Cell Biol 5 806-811, 1993

      38 "Attachmentkinetics and differentiation of osteoblasts on differentbiomaterials" 129-140, 1993

      39 "25-dihydroxyvitamineD3 specific regulation of growth" 401-409, 1985

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      2020-01-01 평가 등재후보학술지 선정 (신규평가) KCI등재후보
      2019-12-01 평가 등재후보 탈락 (계속평가)
      2018-12-01 평가 등재후보로 하락 (계속평가) KCI등재후보
      2015-01-01 평가 등재학술지 유지 (등재유지) KCI등재
      2011-01-01 평가 등재학술지 유지 (등재유지) KCI등재
      2010-02-02 학술지명변경 한글명 : 대한해부학회지 -> Anatomy and Cell Biology
      외국어명 : The Korean Journal of Anatomy -> Anatomy and Cell Biology
      KCI등재
      2008-01-01 평가 등재학술지 선정 (등재후보2차) KCI등재
      2007-01-01 평가 등재후보 1차 PASS (등재후보1차) KCI등재후보
      2006-01-01 평가 등재후보로 하락 (등재유지) KCI등재후보
      2004-01-01 평가 등재 1차 FAIL (등재유지) KCI등재
      2001-07-01 평가 등재학술지 선정 (등재후보2차) KCI등재
      1999-01-01 평가 등재후보학술지 선정 (신규평가) KCI등재후보
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      기준연도 WOS-KCI 통합IF(2년) KCIF(2년) KCIF(3년)
      2016 0.15 0.15 0.1
      KCIF(4년) KCIF(5년) 중심성지수(3년) 즉시성지수
      0.1 0.09 0.223 0.03
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