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      난발현성 단백질 Cathepsin K 발현 및 정제

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      https://www.riss.kr/link?id=T15797576

      • 저자
      • 발행사항

        대전: 충남대학교 신약전문대학원, 2021

      • 학위논문사항
      • 발행연도

        2021

      • 작성언어

        한국어

      • DDC

        615.19 판사항(22)

      • 발행국(도시)

        대전

      • 기타서명

        Expression and purification of Cathepsin K, difficult to expression protein

      • 형태사항

        vi, 68 p.: 삽화; 26 cm.

      • 일반주기명

        충남대학교 논문은 저작권에 의해 보호받습니다.
        지도교수: 김성섭, 이상달
        참고문헌 : p. 62-63

      • UCI식별코드

        I804:25009-000000084562

      • 소장기관
        • 충남대학교 도서관 소장기관정보
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      다국어 초록 (Multilingual Abstract) kakao i 다국어 번역

      Cathepsin K is an enzyme Protein expressed in osteoclasts, and causes osteoporosis by decomposing elements that make up the bone matrix such as elastin, collagen, and gelatin.
      Therefore, the development of Cathepsin K inhibitors could suggest a therapeutic approach to osteoporosis.
      In this study, Cathepsin K gene cloning was performed in several formats to obtain Cathepsin K antigen. Thereafter, transfection was performed on HEK293Ecell, a mammallian cell, and the expression level was confirmed through western blot. Since it was estimated that the expression level of Cathepsin K, a Cysteine protease was toxic to the cell, and the expression level was low, three amino acids (Cysteine, Histidine, Asparagine), which play an important role in activating the hydrolysis of Cathepsin K, were point mutations to Alanine.
      Of these three amino acids, only point mutation of Cysteine to Alanine increased the expression level. In order to further increase the expression level, Signal Peptide Screening from No.1 to No.200 for this format performed. As a result, the expression level was the best in Signal Peptide No.135, and N-NTA affinity chromatography was performed to obtain Cathepsin K antigen for this type. However, a fine amount of protein was expressed and was not neatly separated or purified.
      As a conjecture, a G4S linker, which makes the protein flexible, was constructed between the target gene and the His-tag, considering whether the protein does not bind to His-tag.
      In the same manner as above, after cloning Signal Peptides 1 to 200, Ni-NTA affinity chromatography was performed to obtain antigens.
      As a result, it was confirmed that the expression level was improved compared to before attaching the G4S linker. In order to efficiently obtain Cathepsin K antigen from the economic point of view, a test was conducted using BL21-DE3 as a cell line in E.coli, not a mammallian cell.
      After growing in E.coli in large quantities, cell sonication was performed to confirm which of the supernatant and pellets was highly expressed. As a result, it was identified as an inclusion body expressed in pellets. After purification to separate the inclusion body by adding urea, refolding to remove urea was performed again. In these process, the column was not eluted to see if the protein was denaturated. As a result, it was difficult to obtain an antigen from E.coli, and Cathepsin K antigen was obtained by culturing mammallian cells.
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      Cathepsin K is an enzyme Protein expressed in osteoclasts, and causes osteoporosis by decomposing elements that make up the bone matrix such as elastin, collagen, and gelatin. Therefore, the development of Cathepsin K inhibitors could suggest a therap...

      Cathepsin K is an enzyme Protein expressed in osteoclasts, and causes osteoporosis by decomposing elements that make up the bone matrix such as elastin, collagen, and gelatin.
      Therefore, the development of Cathepsin K inhibitors could suggest a therapeutic approach to osteoporosis.
      In this study, Cathepsin K gene cloning was performed in several formats to obtain Cathepsin K antigen. Thereafter, transfection was performed on HEK293Ecell, a mammallian cell, and the expression level was confirmed through western blot. Since it was estimated that the expression level of Cathepsin K, a Cysteine protease was toxic to the cell, and the expression level was low, three amino acids (Cysteine, Histidine, Asparagine), which play an important role in activating the hydrolysis of Cathepsin K, were point mutations to Alanine.
      Of these three amino acids, only point mutation of Cysteine to Alanine increased the expression level. In order to further increase the expression level, Signal Peptide Screening from No.1 to No.200 for this format performed. As a result, the expression level was the best in Signal Peptide No.135, and N-NTA affinity chromatography was performed to obtain Cathepsin K antigen for this type. However, a fine amount of protein was expressed and was not neatly separated or purified.
      As a conjecture, a G4S linker, which makes the protein flexible, was constructed between the target gene and the His-tag, considering whether the protein does not bind to His-tag.
      In the same manner as above, after cloning Signal Peptides 1 to 200, Ni-NTA affinity chromatography was performed to obtain antigens.
      As a result, it was confirmed that the expression level was improved compared to before attaching the G4S linker. In order to efficiently obtain Cathepsin K antigen from the economic point of view, a test was conducted using BL21-DE3 as a cell line in E.coli, not a mammallian cell.
      After growing in E.coli in large quantities, cell sonication was performed to confirm which of the supernatant and pellets was highly expressed. As a result, it was identified as an inclusion body expressed in pellets. After purification to separate the inclusion body by adding urea, refolding to remove urea was performed again. In these process, the column was not eluted to see if the protein was denaturated. As a result, it was difficult to obtain an antigen from E.coli, and Cathepsin K antigen was obtained by culturing mammallian cells.

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      국문 초록 (Abstract) kakao i 다국어 번역

      Cathepsin K는 파골세포(Osteoclast)에서 발현되는 enzyme protein으로서 elastin, collagen, gelatin과 같은 뼈의 기질을 이루는 요소들을 분해시켜 골다공증(Osteoporosis)를 유발한다. 따라서 Cathepsin K 억제제 개발은 골다공증의 치료적 접근법을 제시 할 수 있을 것으로 기대되고 있다. 본 연구에서는 항체 개발을 위한 전 단계로 Cathepsin K 항원을 얻기 위하여 여러 형식 Cathepsin K gene 클로닝을 진행하였다. 경제적인 면에서 효율적으로 Cathepsin K 항원을 얻기 위하여 mammallian cell이 아닌 E.coli에서 BL21-DE3를 cell line으로 하여 test를 진행하였다. E.coli에서 대량으로 키운 후 cell sonication을 진행하여 Supernatant와 Pellet중 어느곳에서 발현이 많이 되는지 확인하였다. 그 결과 Pellet에서 발현이 되는 Inclusion body로 확인되었다. Urea를 첨가하여 Inclusion body 를 분리하기 위하여 정제를 진행한 후 다시 urea를 제거해주는 Refolding을 진행하였는데 이 과정에서 단백질이 denaturation된 것인지 컬럼에 Elution 하지 않았다. 이후 mammallian cell인 HEK 293Ecell에 transfection을 진행하였고 western blot을 통하여 발현량을 확인한 결과, 원하는 발현량을 얻을 수 없었다. Cysteine protease인 cathepsin K가 cell에 toxic하여 발현량이 낮은 것은 아닌지 추측하였기 때문에cathepsin K의 가수분해를 활성화 나타내는데 중요한 역할을 하는 아미노산 3개(Cysteine, Histidine, Asparagine)를 Alanine으로 point mutation을 진행하였다. 이 3가지 아미노산 중 cysteine을 alanine으로 point mutation 시킨 것만 발현량이 증가한 것으로 보아 추측이 옳았음을 알 수 있었다. 발현된 단백질을 세포 바깥으로 분비하도록 하는 체계를 만들고자 1번부터 200번까지의 Signal Peptide Screening을 진행하였다. 그 결과 Signal Peptide 135번에서 발현량이 가장 우수하였고 이에 대한 catehpsin K 항원을 얻기 위하여 Ni-NTA Affinity Chromatography를 진행하였다. 그러나 미세한 양의 단백질이 발현되었고 깔끔하게 분리, 정제 되지 않았다. 이에 대한 추측으로 단백질이 His-tag에 binding 하지 않는 것인지 생각하여 단백질을 Flexible하게 만들어주는 G4S Linker를 target gene과 His-tag 사이에 제작하였다. 위와 동일하게 Signal Peptide 1번부터 200까지에 대한 클로닝을 진행한 뒤 항원을 얻기 위하여 Ni-NTA Affinity Chromatography를 진행하였다. 그 결과 G4S Linker를 부착하기 전에 비하여 발현량이 개선된 것을 확인 할 수 있었다. 결과적으로 E.coli에서 항원을 얻기는 힘들었고 mammallian cell을 배양하여 Cathepsin K 항원을 얻을 수 있었다.
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      Cathepsin K는 파골세포(Osteoclast)에서 발현되는 enzyme protein으로서 elastin, collagen, gelatin과 같은 뼈의 기질을 이루는 요소들을 분해시켜 골다공증(Osteoporosis)를 유발한다. 따라서 Cathepsin K 억제제 ...

      Cathepsin K는 파골세포(Osteoclast)에서 발현되는 enzyme protein으로서 elastin, collagen, gelatin과 같은 뼈의 기질을 이루는 요소들을 분해시켜 골다공증(Osteoporosis)를 유발한다. 따라서 Cathepsin K 억제제 개발은 골다공증의 치료적 접근법을 제시 할 수 있을 것으로 기대되고 있다. 본 연구에서는 항체 개발을 위한 전 단계로 Cathepsin K 항원을 얻기 위하여 여러 형식 Cathepsin K gene 클로닝을 진행하였다. 경제적인 면에서 효율적으로 Cathepsin K 항원을 얻기 위하여 mammallian cell이 아닌 E.coli에서 BL21-DE3를 cell line으로 하여 test를 진행하였다. E.coli에서 대량으로 키운 후 cell sonication을 진행하여 Supernatant와 Pellet중 어느곳에서 발현이 많이 되는지 확인하였다. 그 결과 Pellet에서 발현이 되는 Inclusion body로 확인되었다. Urea를 첨가하여 Inclusion body 를 분리하기 위하여 정제를 진행한 후 다시 urea를 제거해주는 Refolding을 진행하였는데 이 과정에서 단백질이 denaturation된 것인지 컬럼에 Elution 하지 않았다. 이후 mammallian cell인 HEK 293Ecell에 transfection을 진행하였고 western blot을 통하여 발현량을 확인한 결과, 원하는 발현량을 얻을 수 없었다. Cysteine protease인 cathepsin K가 cell에 toxic하여 발현량이 낮은 것은 아닌지 추측하였기 때문에cathepsin K의 가수분해를 활성화 나타내는데 중요한 역할을 하는 아미노산 3개(Cysteine, Histidine, Asparagine)를 Alanine으로 point mutation을 진행하였다. 이 3가지 아미노산 중 cysteine을 alanine으로 point mutation 시킨 것만 발현량이 증가한 것으로 보아 추측이 옳았음을 알 수 있었다. 발현된 단백질을 세포 바깥으로 분비하도록 하는 체계를 만들고자 1번부터 200번까지의 Signal Peptide Screening을 진행하였다. 그 결과 Signal Peptide 135번에서 발현량이 가장 우수하였고 이에 대한 catehpsin K 항원을 얻기 위하여 Ni-NTA Affinity Chromatography를 진행하였다. 그러나 미세한 양의 단백질이 발현되었고 깔끔하게 분리, 정제 되지 않았다. 이에 대한 추측으로 단백질이 His-tag에 binding 하지 않는 것인지 생각하여 단백질을 Flexible하게 만들어주는 G4S Linker를 target gene과 His-tag 사이에 제작하였다. 위와 동일하게 Signal Peptide 1번부터 200까지에 대한 클로닝을 진행한 뒤 항원을 얻기 위하여 Ni-NTA Affinity Chromatography를 진행하였다. 그 결과 G4S Linker를 부착하기 전에 비하여 발현량이 개선된 것을 확인 할 수 있었다. 결과적으로 E.coli에서 항원을 얻기는 힘들었고 mammallian cell을 배양하여 Cathepsin K 항원을 얻을 수 있었다.

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      목차 (Table of Contents)

      • 목차
      • 초록 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ ⅰ
      • List of table ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ ⅲ
      • List of figure ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ ⅳ
      • Abbreviation ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ ⅵ
      • 목차
      • 초록 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ ⅰ
      • List of table ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ ⅲ
      • List of figure ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ ⅳ
      • Abbreviation ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ ⅵ
      • Ⅰ. 서론 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 1
      • Ⅱ. 재료 및 실험 방법
      • [Part 1. E.coli Expression test]
      • 1. 실험 재료 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 5
      • 1-1. 사용 Vector 및 DNA ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 5
      • 1-2. E.coli Expression test에서 사용한 Vector ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 6
      • 2. 실험 방법 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 7
      • 2-1. DNA Cloning ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 7
      • 2-2. E.coli Expression test ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 8
      • 2-3. Inclusion body Isolation ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 9
      • 2-4. Purification & Urea refolding ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 10
      • Ⅱ. 재료 및 실험 방법
      • [Part 2. Mammallian cell Expression test]
      • 1. 실험 재료 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 12
      • 1-1. Vector 및 세포주 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 12
      • 1-2. 배양 및 배양액 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 14
      • 2. 실험 방법 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 15
      • 2-1. 항원 디자인 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 15
      • 2-2. 중합효소 연쇄 반응 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 17
      • 2-3. Catalytic activity아미노산에 대한 Alanine point mutation ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 19
      • 2-4. Signal Peptide Screening ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 25
      • 2-5. (Gly-Gly-Gly-Gly-Ser)3 Linker Cloning ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 30
      • 2-6. HEK293E cell로의 형질도입 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 35
      • 2-7. 단백질 발현 확인 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 36
      • 2-8. 단백질 정제 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 37
      • 2-9. 단백질 정량 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 38
      • Ⅲ. 실험 결과
      • [Part 1. E.coli Expression test]
      • 3-1. E.coli에 Cathepsin K Cloning ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 39
      • 3-2. Expression test ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 40
      • 3-3. Inclusion body Isolation: Purification & Refolding ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 42
      • Ⅲ. 실험 결과
      • [Part 2. Mammallian cell Expression test]
      • 3-1. Cathepsin K Cloning through Alanine point mutation ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 46
      • 3-2. Alanine point mutation한 Cathepsin K의 발현 확인 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 48
      • 3-3. Alanine point mutation 한 Cathepsin K의 Signal Peptide Screening ∙∙∙∙∙∙ 50
      • 3-4. 단백질 정제 결과 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 58
      • 3-5. (G4S)3 linker를 이용한 단백질 발현, 정제 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 59
      • Ⅳ. 결론 및 고찰∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 60
      • Ⅴ. 참고 문헌 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 62
      • Ⅵ. ABSTRACT IN ENGLISH (영문 초록) ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 64
      • Ⅶ. 감사의 글 ∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙∙ 67
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