RISS 학술연구정보서비스

검색
다국어 입력

http://chineseinput.net/에서 pinyin(병음)방식으로 중국어를 변환할 수 있습니다.

변환된 중국어를 복사하여 사용하시면 됩니다.

예시)
  • 中文 을 입력하시려면 zhongwen을 입력하시고 space를누르시면됩니다.
  • 北京 을 입력하시려면 beijing을 입력하시고 space를 누르시면 됩니다.
닫기
    인기검색어 순위 펼치기

    RISS 인기검색어

      내열성 효소 단백질 창출을 위한 Bacillus, streptomyces 및 벼 α-amylase 유전자 Clone의 비교 분석 = Comparative analysis of αamylase gene clones from bacillus, streptomyces and rice for the production of thermostable enzyme

      한글로보기

      https://www.riss.kr/link?id=M2882858

      • 0

        상세조회
      • 0

        다운로드
      서지정보 열기
      • 내보내기
      • 내책장담기
      • 공유하기
      • 오류접수

      부가정보

      목차 (Table of Contents)

      • 목차
      • 총괄과제 「내열성 효소 단백질 창출을 위한 Bacillus, Streptomyces 및 벼α-amylase 유전자 Clone의 비교 분석」
      • 1. 서론 = 19
      • 2. 연구방법 = 21
      • 제1장 제1 세부과제 = 21
      • 목차
      • 총괄과제 「내열성 효소 단백질 창출을 위한 Bacillus, Streptomyces 및 벼α-amylase 유전자 Clone의 비교 분석」
      • 1. 서론 = 19
      • 2. 연구방법 = 21
      • 제1장 제1 세부과제 = 21
      • 제1절 벼 α-amylase 유전자 클로닝을 위한 Probe DNA의 확보 = 21
      • 1. 벼 genomic DNA와 Bacillus licheniformis α-amylase 간의 상동성 조사 = 21
      • 제2절 식물 α-amylase 유전자의 deoxyoligonucleotide 합성 = 21
      • 1. Deoxyoligonucleotide 설계, 합성 및 정제 = 21
      • 2. 벼 genomic DNA와의 상동성 조사 = 22
      • 제3절 벼 호분층의 cDNA 유전자 은행 작성 = 22
      • 1. 호분층 분리 및 배양 = 23
      • 2. 호분층으로부터의 RNA 분리 = 23
      • 가. Guanidinium/hot phenol method에 의한 total RNA분리 = 23
      • 나. Oligo(dT)-cellulose column chromatography에 의한 mRNA 분리 = 23
      • 3. cDNA library 작성 = 23
      • 가. cDNA 합성 = 24
      • 나. cDNA 정제 = 24
      • 다. Adaptor ligation 및 kination = 24
      • 라. Ligation of cDNA with λgt 11 arms and in vitro packaging = 25
      • 제4절 cDNA library screening = 25
      • 1. Iodine test를 이용한 cDNA library screening = 26
      • 2. Plaque hybridization를 이용한 cDNA library screening = 26
      • 3. PCR을 이용한 cDNA library screening = 26
      • 제5절 PCR을 이용한 α-amylase의 direct cloning = 27
      • 1. Oligonucleotide의 설계, 합성 및 정제 = 27
      • 2. PCR에 의한 full length α-amylase 유전자의 cloning = 27
      • 3. Ligation 반응 및 E.coli 내로의 transformation = 27
      • 4. Plasmid DNA의 분리 및 정제 = 27
      • 제6절 α-Amylase 유전자의 sequencing = 28
      • 제7절 α-Amylase 유전자의 구조 및 발현 = 28
      • 1. 유전자의 구조 = 28
      • 가. Probe 준비 = 28
      • 나. Genomic DNA의 분리 = 29
      • 다. Genomic DNA digestion = 29
      • 라. Southern blot analysis = 30
      • 2. Northorn hybridization 및 RT/PCR = 30
      • 가. Northern hybridization = 30
      • 나. RT/PCR = 31
      • 제2장 제2 세부과제 = 32
      • 제1절 α-Amylase의 생산 및 정제 = 32
      • 1. 사용 균주 및 배지 = 32
      • 2. 형질 전환 = 32
      • 3. 효소의 생산 = 33
      • 4. 효소의 분리 정제 = 33
      • 제2절 Immunoaffinity chromatography = 34
      • 1. α-amylase의 antibody 제조 = 35
      • 2. Immunoadsorbent의 제조 = 35
      • 3. Immunoaffinity chromatography = 37
      • 제3절 α-amylase gene의 DNA 염기 서열 결정 = 37
      • 1. Single stranded DNA 제조 = 37
      • 2. Sequencing = 37
      • 제4절 Modified α-amylase의 제조 = 38
      • 제3장 제3 세부 연구과제 = 38
      • 제1절 Amylase 생산성 방선균의 분리와 선별 = 38
      • 제2절 Amylase 생산균주의 동정 = 39
      • 1. 세포벽 구성성분의 분석 = 39
      • 2. 형태적 특징 및 성장 생리 특성 = 40
      • 제3절 선발균주에 의한 Amylase 의 정제 = 40
      • 1. 효소의 생산조건 = 41
      • 2. 효소의 정제 = 41
      • 3. 효소의 역가 측정 = 41
      • 4. 단백질 농도 측정 = 42
      • 제4절 아밀라제 유전자의 클로닝 = 42
      • 1. 균주 및 plasmid = 42
      • 2. Total DNA의 분리 = 42
      • 3. Plasmid DNA의 분리 및 정제 = 43
      • 4. Amylase gene cloning 및 E. coli의 형질전환 = 43
      • 5. DNA-restriction enzyme mapping = 43
      • 제5절 형질전환된 대장균이 생산하는 아밀라제의 특성 = 44
      • 1. Crude Enzyme의 분리 = 44
      • 2. SDS-PAGE와 amylase activity 확인 = 44
      • 3. Amylase역가 측정 = 45
      • 4. TLC와 HPLC을 이용한 반응 생산물의 성분분석 = 45
      • 3. 결과 = 46
      • 제1장 제1 세부과제 = 46
      • 제1절 벼 α-amylase 유전자 cloning을 위한 probe DNA의 확보 = 46
      • 1. 벼 genomic DNA와 Bacillus 1. α-amylase 간의 상동성 조사 = 46
      • 2. 식물 α-amylase 유전자의 deoxyoligonucleotide 합성 = 46
      • 가. Deoxyoligonucleotide 설계, 합성 및 정제 = 47
      • 나. 벼 genomic DNA와의 상동성 조사 = 47
      • 제2절 벼 호분층의 cDNA 유전자 은행 작성 = 47
      • 1. 호분층의 분리 및 배양 = 47
      • 2. 호분층으로부터의 RNA 분리 = 48
      • 가. Total RNA 및 mRNA의 분리 = 48
      • 나. Northern hybridization analysis = 48
      • 제3절 cDNA library 작성 = 48
      • 제4절 cDNA library screening = 49
      • 1. Ioding test를 이용한 cDNA library screening = 49
      • 2. Plaque hybridization를 이용한 cDNA library screening = 49
      • 3. PCR을 이용한 cDNA library screening = 50
      • 제5절 PCR을 이용한 α-amylase의 direct 클로닝 = 50
      • 1. Oligonucleotide의 설계, 합성 및 정제 = 50
      • 2. PCR에 의한 full length α-amylase 유전자의 클로닝 = 51
      • 3. Ligation 반응 및 E.coli내로의 transformation = 51
      • 4. Insert 확인 = 51
      • 제6절 α-Amylase 유전자의 sequencing = 52
      • 제7절 α-Amylase 유전자의 구조 및 발현 = 52
      • 1. Southern blotting = 52
      • 2. PCR를 이용한 α-amylase 유전자의 발현 검정 = 53
      • 제2장 제 2세부과제 = 54
      • 제1절 α-amylase 의 분리, 정제 = 54
      • 제2절 Antibody의 제조 = 54
      • 제3절 Immunoaffinity chromatography = 55
      • 제4절 Immunoblotting 및 Southern blotting analysis = 55
      • 제5절 DNA 염기 서열 = 56
      • 1. 내열성 α-amylase 유전자의 염기서열 = 56
      • 2. 아미노산 조성 = 57
      • 3. Codon usage = 57
      • 4. Signal peptide = 58
      • 제6절 Modified α-amylase 의 제조 = 58
      • 1. 특수 product 생산성 amylase의 제조 = 58
      • 2. Modified α-amylase의 효소적 특성 = 59
      • 3. Modified α-amylase의 action pattern = 59
      • 제3장 제 3 세부과제 = 60
      • 제1절 균주의 선별 = 60
      • 1. 1차 선별 = 60
      • 2. 2차 선별 = 60
      • 제2절 선별 균주의 동정 = 60
      • 제3절 효소의 정제 및 특성 = 71
      • 1. 효소의 정제 = 61
      • 2. Streptomyces KSM-35 amylase의 작용유형 = 61
      • 3. 온도와 pH가 Streptomyces KSM-35 amylase 활성에 미치는 영향 = 62
      • 4. 몇가지 저해제가 Streptomyces KSM-35 amylase 활성에 미치는 영향 = 62
      • 5. Streptomyces KSM-35의 amylase의 등전점 측정 = 62
      • 6. Streptomyces KSM-35의 amylase의 분자량 측정 = 62
      • 7. Streptomyces KSM-35 amylase 의 전분 분해도 = 63
      • 8. 전분 가수분해 산물의 분석 = 63
      • 제4절 Streptomyces sp. KSM-35의 amylase 유전자 = 63
      • 1. Amylase gene의 cloning = 63
      • 2. Amylase 유전자의 restriction enzyme mapping = 64
      • 제5절 형질전환된 E. coli에서 생산된 amylase 의 특성 = 64
      • 1. E.coli에서 amylase의 세포내 분포에 따른 activity 측정 = 64
      • 2. SDS-PAGE을 이용한 amylase activity의 확인 = 65
      • 3. 반응 최적 온도 = 65
      • 4. 열 안정성 = 66
      • 5. 반응 최적 pH = 66
      • 6. 효소의 전분 가수 분해 산물의 TLC 및 HPLC에 의한 분석 = 66
      • 4. 고찰 = 68
      • 제1장 제1 세부과제 = 68
      • 제1절 벼 α-amylase 유전자 클로닝을 위한 probe DNA의 확보 = 68
      • 제2절 cDNA 유전자 은행의 작성 및 α-amylase cDNA clone의 선발 = 68
      • 제3절 PCR을 이용한 α-amylase유전자의 direct 클로닝 = 70
      • 제4절 α-Amylase 유전자의 염기서열 분석 = 70
      • 제5절 벼 α-amylase 유전자의 구조 및 발현 = 71
      • 제2장 제2 세부과제 = 73
      • 제3장 제3 세부과제 = 77
      • 제1절 균주의 선별 = 78
      • 제2절 선별 균주의 동정 = 78
      • 제3절 효소의 정제 및 특성 = 79
      • 제4절 Streptomyces sp. KSM-35의 amylase 유전자 = 79
      • 제5절 형질전환된 E. coli에서 생산된 amylase의 특성 = 79
      • 5. 결론 = 81
      • 6. 참고문헌 = 85
      • 제1세부과제 벼 α-amylase의 유전자 cloning 및 그 분자생물학적 연구
      • 1. 서론 = 95
      • 2. 연구방법 = 98
      • 제1장 벼 α-amylase 유전자 클로닝을 위한 probe DNA의 확보 = 98
      • 제1절 벼genomic DNA와 Bacillus 1. α-amylase 간의 상동성 조사 = 98
      • 제2절 식물 α-amylase 유전자의 deoxyoligonucleotide 합성 = 98
      • 1. Deoxyoligonucleotide 설계, 합성 및 정제 = 98
      • 2. 벼 genomic DNA와의 상동성 조사 = 100
      • 제2장 벼 호분층의 cDNA 유전자 은행 작성 = 102
      • 제1절 호분층 분리 및 배양 = 102
      • 제2절 호분층으로부터의 RNA 분리 = 102
      • 1. Guanidinium/hot phenol method에 의한 total RNA분리 = 102
      • 2. Oligo(dT)-cellulose column chromatography를 이용한 mRNA 분리 = 103
      • 제3절 cDNA library 작성 = 104
      • 1. cDNA 합성 = 104
      • 2. cDNA 정제 = 105
      • 3. Adaptor ligation 및 kination = 105
      • 4. Ligation of cDNA with λgt 11 arms and in vitro packaging = 106
      • 제3장 cDNA library screening = 108
      • 제1절 Iodine test를 이용한 cDNA library screening = 108
      • 제2절 Plaque hybridization를 이용한 cDNA library screening = 108
      • 제3절 PCR을 이용한 cDNA library screening = 109
      • 제4장 PCR을 이용한 α-amylase의 direct cloning = 110
      • 제1절 Oligonucleotide의 설계, 합성 및 정제 = 110
      • 제2절 PCR에 의한 full length α-Amylase 유전자의 구조 및 발현 = 110
      • 제3절 Ligation 반응 및 E.coli내로의 transformation = 110
      • 제4절 Plasmid DNA의 분리 및 정제 = 111
      • 제5장 α-Amylase 유전자의 Sequencing = 113
      • 제1절 Single Strand DNA의 제조 = 113
      • 제2절 DNA Sequencing = 113
      • 제6장 α-Amylase 유전자의 구조 및 발현 = 114
      • 제1절 Southern blotting = 114
      • 1. Probe DNA 준비 = 114
      • 2. Genomic DNA의 분리 = 115
      • 3. Genomic DNA digestion = 115
      • 4. Southern blot analysis = 115
      • 제2절 Northern blot analysis 및 RT/PCR = 115
      • 1. Northern blotanalysis = 115
      • 2. RT/PCR = 116
      • 3. 결과 = 117
      • 제1장 벼 α-amylase 유전자 클로닝을 위한 probe DNA의 확보 = 117
      • 제1절 벼와 Bacillus licheniformis α-amylse간의 상동성 조사 = 117
      • 제2절 식물 α-amylase 유전자의 deoxyoligonucleotide 합성 = 117
      • 1. Deoxyoligonucleotide 설계, 합성 및 정제 = 117
      • 2. 벼 genomic DNA와의 상동성 조사 = 118
      • 제2장 벼 호분층의 cDNA 유전자 은행 작성 = 120
      • 제1절 호분층의 분리 및 배양 = 120
      • 제2절 호분층으로부터의 RNA 분리 = 120
      • 1. Total RNA 및 mRNA의 분리 = 120
      • 2. Northern hybridization analysis = 123
      • 제3절 cDNA library 작성 = 123
      • 제3장 cDNA library screening = 128
      • 제1절 Iodine test를 이용한 cDNA library screening = 128
      • 제2절 Plaque hybridization를 이용한 cDNA library screening = 128
      • 제3절 PCR을 이용한 cDNA library screening = 130
      • 제4장 PCR을 이용한 α-amylase의 direct 클로닝 = 132
      • 제1절 Oligonucleotide의 설계, 합성 및 정제 = 132
      • 제2절 PCR에 의한 full length α-amylase 유전자의 클로닝 = 133
      • 제3절 Ligation 반응 및 E.coli내로의 transformation = 133
      • 제4절 Insert 확인 = 133
      • 제5장 α-Amylase 유전자의 sequencing = 138
      • 제6장 α-Amylase 유전자의 구조 및 발현 = 142
      • 1. Southern blotting = 142
      • 2. Northern blot analysis 및 RT/PCR = 142
      • 4. 고찰 = 148
      • 제1장 벼 α-amylase 유전자 클로닝을 위한 probe DNA의 확보 = 148
      • 제2장 cDNA 유전자 은행의 작성 및 α-amylase cDNA clone의 선발 = 149
      • 제3장 PCR을 이용한 α-amylase유전자의 direct 클로닝 = 152
      • 제4장 α-Amylase 유전자의 염기서열 분석 = 154
      • 제5장 벼 α-amylase 유전자의 구조 및 발현 = 155
      • 5. 결론 = 157
      • 6. 참고문헌 = 159
      • 제2부 세부과제 「내열성 세균 α-amylase gene을 이용한 효소의 특성 연구 및 정제 기술 개발」
      • 1. 서론 = 169
      • 2. 연구방법 = 172
      • 제1장. α-amylase의 생산 및 정제 = 172
      • 제1절 사용 균주 및 배지 = 172
      • 1. 사용 균주 및 배지 = 172
      • 2. 형질 전환 = 172
      • 제2절 연구목적 = 172
      • 제3절 효소의 생산 = 173
      • 제4절 효소의 분리 정제 = 174
      • 제2장 Immunoaffinity chromatography = 177
      • 1. α-amylase의 antibody 제조 = 177
      • 2. Immunoadsorbent의 제조 = 179
      • 3. Immunoaffinity chromatography = 179
      • 제3장 α-amylase gene의 DNA 염기 서열 결정 = 181
      • 제1절. Single stranded DNA 제조 = 181
      • 제2절. Sequencing = 181
      • 제4장 Modified α-amylase의 제조 = 182
      • 3. 결과 = 184
      • 제1장. α-amylase의 분리, 정제 = 184
      • 제2장. Antibody의 제조 = 191
      • 제3장. Immunoaffinity chromatography = 193
      • 제4장. Immunoblotting 및 Southern blotting analysis = 198
      • 제5장. DNA 염기서열 = 202
      • 제1절. 내열성 α-amylase 유전자의 염기서열 = 202
      • 제2절. 아미노산 조성 = 202
      • 제3절. Codon usage = 213
      • 제4절. Signal peptide = 213
      • 제6장. Modified α-amylase의 제조 = 219
      • 제1절. 특수 product 생산성 amylase의 제조 = 219
      • 제2절. Modified α-amylase의 효소적 특성 = 223
      • 제3절. Modified α-amylase의 action pattern = 223
      • 4. 고찰 = 227
      • 5. 결론 = 232
      • 6. 참고문헌 = 233
      • 제3 세부과제
      • 1. 서론 = 243
      • 2. 연구방법 = 246
      • 제1장 Amylase 생산성 방선균의 분리와 선별 = 246
      • 제2장 Amylase 생산균주의 동정 = 247
      • 제1절 세포벽 구성성분의 분석 = 247
      • 제2절 형태적 특징 및 성장 생리 특성 = 250
      • 제3장 선발균주에 의한 Amylase의 정제 = 251
      • 제1절 효소의 생산 조건 = 251
      • 제2절 효소의 정제 = 251
      • 제3절 효소의 역가 측정 = 253
      • 제4절 단백질 농도 측정 = 253
      • 제4장 아밀라제 유전자의 클로닝 = 254
      • 제1절 균주 및 plasmid = 254
      • 제2절 시약 및 제한효소 = 254
      • 제3절 배지 = 255
      • 제4절 Total DNA의 분리 = 255
      • 제5절 Plasmid DNA의 분리 및 정제 = 256
      • 제6절 Amylase gene cloning 및 E. coli의 형질전환 = 257
      • 제7절 DNA-restriction enzyme mapping = 259
      • 제5장 형질전환된 대장균이 생산하는 아밀라제의 특성 = 260
      • 제1절 Crude Enzyme의 분리 = 260
      • 제2절 SDS-PAGE와 amylase activity 확인 = 260
      • 제3절 Amylase역가 측정 = 261
      • 제4절 TLC와 HPLC을 이용한 반응 생산물의 성분분석 = 261
      • 3. 결과 = 263
      • 제1장 균주의 선별 = 263
      • 제1절 1차 선별 = 263
      • 제2절 2차 선별 = 263
      • 제2장 선별 균주의 동정 = 265
      • 제3장 효소의 정제 및 특성 = 270
      • 제1절 효소의 정제 = 270
      • 제2절 Streptomyces KSM-35의 amylase의 작용유형 = 270
      • 제3절 온도와 PH가 Streptomyces KSM-35의 amylase 활성에 미치는 영향 = 275
      • 제4절 몇가지 저해제가 Streptomyces KSM-35의 amylase 활성에 미치는 영향 = 275
      • 제5절 Streptomyces KSM-35의 amylase의 등전점 측정 = 280
      • 제6절 Streptomyces KSM-35의 amylase의 분자량 측정 = 280
      • 제7절 Streptomyces KSM-35의 amylase의 전분 분해도 = 280
      • 제8절 전분 가수분해 산물의 분석 = 284
      • 제4장 Streptomyces sp. KSM-35의 amylase 유전자 = 286
      • 제1절 Amylase gene의 cloning = 286
      • 제2절 Amylase 유전자의 restriction enzyme mapping = 286
      • 제5장 형질전환된 E. coli에서 생산된 amylase 의 특성 = 292
      • 제1절 E.coli에서 amylase의 세포내 분포에 따른 activity 측정 = 292
      • 제2절 SDS-PAGE을 이용한 amylase activity의 확인 = 294
      • 제3절 반응 최적 온도 = 294
      • 제4절 열 안정성 = 296
      • 제5절 반응 최적 pH = 296
      • 제6절 효소의 전분 가수 분해 산물의 TLC 및 HPLC에 의한 분석 = 299
      • 4. 고찰 = 303
      • 제1장 균주의 선별 = 303
      • 제2장 선별 균주의 동정 = 303
      • 제3장 효소의 정제 및 특성 = 306
      • 제4장 Streptomyces sp. KSM-35의 amylase 유전자 = 309
      • 제5장 형질전환된 E. coli에서 생산된 amylase의 특성 = 311
      • 5. 결론 = 314
      • 6. 참고문헌 = 316
      더보기

      분석정보

      View

      상세정보조회

      0

      Usage

      원문다운로드

      0

      대출신청

      0

      복사신청

      0

      EDDS신청

      0

      동일 주제 내 활용도 TOP

      더보기

      이 자료와 함께 이용한 RISS 자료

      나만을 위한 추천자료

      해외이동버튼