Methamphetamin 남용입원환자들의 C형간염 항체 양성률에 관한 조사

김진규,이지호,조병만,이수일,Kim, Jin-Kyoo,Lee, Ji-Ho,Cho, Byung-Mann,Lee, Soo-Il 대한예방의학회 1991 Journal of Preventive Medicine and Public Health Vol.24 No.4

약물남용자들의 C형간염 감염 상태를 파악하고자 methamphetamine 남용에 의한 중독 증상으로 입원하고 있는 141명을 대상으로 하여 약물남용의 빈도와 기간, 약물 투여경로 등에 관한 조사와 함께 혈청내 C형간염 항체, B형간염 표식자 및 간기능 검사를 실시하고 이들 사이의 관련성을 검토하여 다음과 같은 결과를 얻었다. 1. C형간염 항체 양성률은 60.3%(85/141)이었으며 성별로는 차이가 없었으나 연령군별로는 40세 이상군에서 증가되는 경향이 있었다. 2. C형간염 항체의 양성률은 약물남용의 빈도가 높았던 군과 약물남용의 기간이 길었던 군에서 유의하게 높았으나 B형간염 표면항원의 양성률은 약물남용의 빈도 및 기간과 유의한 차이가 없었다. 이상의 결과로 보아 methamphetamine 남용자에서 C형간염 유병률은 매우 높을 것이며 감염 전파경로에 있어서 C형간염은 반복적인 경주적 폭로가 중요 전파 요인일 것으로 추측된다. This study was designed to estimate the prevalence of hepatitis C virus(HCV) infection in drug abusers. The subjects were 141 inpatients who had been admitted to a general hospital with the symptoms and signs of methamphetamine intoxication. Seroprevalence of antibody to the hepatitis C virus(anti-HCV) was 60.3%(85/141) and it was higher in the group with increased frequency and duration of drug abuse, but such a relationship was not found in the seroprevalence of hepatitis B surface antigen(HBsAg). These findings suggested the possibility of high prevalence of HCV infection in methamphetamine abusers, and the importance of repetitive percutaneous injection in the transmission of HCV infection.

Leucine zipper도메인의 융합에 의한 바이오시밀러 레미케이드 Single-chain Fv 항체의 항원 결합력 개선

김진규(Jin-Kyoo Kim),김태환(Tae Hwan Kim) 한국생명과학회 2020 생명과학회지 Vol.30 No.11

생쥐의 가변부위가 인간의 정상부위에 연결되어 제조된 바이오시밀러 자연항체치료제인 레미케이드는 암괴사인자-알파(TNF-α)에 특이적인 항체로써 카이메릭 단일클론항체이며 류마티스 관절염치료를 위해 개발되었다. 바이오시밀러 레미케이드 항체의 생물학적 기능을 연구하기 위해 우리는 단백질 데이터 은행을 이용한 생물정보학 분석을 수행하여 레미케이드 자연항체와 암괴사인자-알파 항원간의 결합기작특징을 분석하였다. 자연항체를 생산하는 세포의 유전적 불안정성 때문에 레미케이드 항체생산이 제한되므로 우리는 중 사슬 가변부위를 다중펩타이드 링커에 의해 경 사슬 가변부위에 연결된 레미케이드 ScFv항체(Remicade)를 제조하였다. 더욱이 더 높은 생산과 더 높은 항원결합력을 위해 레미케이드 ScFv를 leucine zipper에 융합시켰다. Remicade와 RemicadeScZip ScFv는 대장균에서 발현되었고 Ni+-NTA-아가로스 컬럼으로 정제하였다. 정제된 단백질들은 예상한대로 sodium dodecyl sulfate–polyacrylamide electrophoresis에서 28.80 kDa과 33.96 kDa을 나타내었다. Remicade는 ELISA, western blot에서 TNF-α 항원에 대한 결합력이 관찰되지 않았으나 RemicadeScZip은 항원결합력을 나타내었다. 추가적인 BLI분석으로 RemicadeScZip의 TNF-α 항원에 대한 결합력을 재확인시켜주었으며 이 결과는 Leucine zipper가 레미케이드 ScFv의 접힘을 안정화시키고 TNF-α 항원에 대한 결합력을 개선시켰음을 제시해주고 있다. Remicade is a therapeutic biosimilar natural antibody in which the mouse variable domain has been linked to the human constant domain. It is a chimeric monoclonal antibody specific to tumor necrosis factor-alpha (TNF-α) and has been developed for the treatment of rheumatoid arthritis. To investigate the biological activity of the Remicade antibody, we carried out a bioinformatics study using a protein data bank to characterize the TNF-α antigen binding mechanism of the Remicade natural antibody. Because the production of the Remicade antibody is often limited by genetic instability of the natural antibody-producing cell, we generated a Remicade single-chain variable domain fragment antibody (Remicade) in which a heavy chain variable domain (VH) is joined with a light chain variable domain (VL) by a polypeptide linker. Furthermore, Remicade was fused to a leucine zipper (RemicadeScZip) for higher production and higher antigen-binding activity than Remicade. The Remicade and Remicade ScZip were expressed in Escherichia coli and purified by a Ni+-NTA-agarose column. As expected, the purified proteins had migrated as 28.80 kDa and 33.96 kDa in sodium dodecyl sulfate–polyacrylamide electrophoresis. The TNF-α antigen binding activity of Remicade was not observed by ELISA and western blot. In contrast, RemicadeScZip showed antigen-binding activity. Additional bio-layer interferometry analysis confirmed the antigen-binding activity of RemicadeScZip, suggesting that the leucine zipper stabilized the folding of RemicadeScZip in a denatured condition and improved the TNF-α antigen-binding activity.

발효 , 세포배양 , 생물공정 Acinetobacter sp. KL-9 에 의한 Indole 분해 및 Indigo 생성의 특성

김진완(Jin Wan Kim),김진규(Jin Kyoo Kim),이수오(Soo O Lee),이경(Kyoung Lee) 한국미생물생명공학회 2001 Korean Journal of Applied Microbiology and Biotech Vol.29 No.1

N/A N/A

대장균의 alkaline phosphatase가 융합된 anti-DR4 single-chain Fv (ScFv) 항체의 개발

한승희,김진규,Han, Seung Hee,Kim, Jin-Kyoo 한국미생물학회 2016 미생물학회지 Vol.52 No.1

항체의 특이적 결합을 분석하는 효소면역분석법은 항원의 탐지를 위해 주로 horseradish peroxidase (HRP) 또는 alkaline phosphatase (AP) 등의 효소를 사용한다. 이때 효소를 주로 화학적으로 항체에 결합시켜 사용하게 되는데 이 과정이 복잡하며 불규칙하게 일어나서 항체 및 효소의 기능을 감소시키게 된다. 또한 대부분의 효소면역분석법에서는 주로 일차 항체의 항원결합을 탐지하기위해 이차 항체를 사용하는데, 즉 이차 항체에 결합한 효소의 기질발색에 의해 일차 항체의 항원결합을 탐지하므로 이차 항체가 요구 되어질 뿐만 아니라 이차 항체의 일차 항체에 대한 반응을 위한 부가적인 배양시간이 필요하다. 더욱 더 중요한 것은 이차 항체만의 비특이적 항원 결합 역시 제거되어져야 한다. 본 연구에서는 대장균의 genomic DNA로부터 PCR을 통해 alkaline phosphatase 유전자(Sadeghi et al., 2008)를 증폭 분리한 다음 이를 TRAIL (tumor necrosis factor ${\alpha}$ related apoptosis induced ligand) receptor인 death receptor 4 (DR4)에 특이적으로 결합하는 hAY4 single-chain Fv (ScFv)에 융합시킨 재조합 ScFv-AP 형태로 대장균에서 발현시켜 정제하였다. 정제된 hAY4 ScFv-AP는 SDS-PAGE에서 단량체(monomer) 분자량인 73.8 kDa을 나타내었다. 그러나 size-exclusion chromatography(SEC)에서는 147.6 kDa을 나타내는 결과를 통해 hAY4 ScFv-AP는 AP의 자연적인 비공유결합에 의해 이량체(dimeric form)형성이 유도되어짐을 확인하였다. 또한 ELISA, Western blot 그리고 immunocytochemistry에서 이차 항체 없이 일차 항체 hAY4 ScFv에 직접 융합된 AP의 기질발색에 의해 ScFv 일차 항체의 특이적 항원결합을 나타내었다. 요약하면 hAY4 ScFv와 대장균의 alkaline phosphatase 유전자를 융합시켜 대장균에서 수용성 형태로 성공적으로 정제하였으며 정제된 ScFv-AP 융합단백질은 ELISA, Western blot 및 immunocytochemistry에서 항원결합력을 나타냈으며 또한 구매에 따른 고비용, 부가적인 배양시간 및 비특이적 결합에 의한 오류 등의 문제점을 갖는 이차 항체를 사용하지 않고 직접적인 항원결합력을 나타내었다. Enzyme immunoassay to analyze specific binding activity of antibody to antigen uses horseradish peroxidase (HRP) or alkaline phosphatase (AP). Chemical methods are usually used for coupling of these enzymes to antibody, which is complicated and random cross-linking process. As results, it causes decreases or loss of functional activity of either antibody or enzyme. In addition, most enzyme assays use secondary antibody to detect antigen binding activity of primary antibody. Enzymes coupled to secondary antibody provide a binding signal by substrate-based color development, suggesting secondary antibody is required in enzyme immunoassay. Additional incubation time for binding of secondary antibody should also be necessary. More importantly, non-specific binding activity caused by secondary antibody should also be eliminated. In this study, we cloned AP isolated from Escherichia coli (E. coli) chromosome by PCR and fused to) hAY4 single-chain variable domain fragment (ScFv) specific to death receptor (DR4) which is a receptor for tumor necrosis factor ${\alpha}$ related apoptosis induced ligand (TRAIL). hAY4 ScFv-AP expressed in E. coli showed 73.8 kDa as a monomer in SDS-PAGE. However, this fusion protein shown in size-exclusion chromatography (SEC) exhibited 147.6 kDa as a dimer confirming that natural dimerization of AP by non-covalent association induced ScFv-AP dimerization. In several immunoassay such as ELISA, Western blot and immunocytochemistry, it showed antigen binding activity by color development of substrates catalyzed by AP directly fused to primary hAY4 ScFv without secondary antibody. In summary, hAY4 ScFv-AP fusion protein was successfully purified as a soluble dimeric form in E. coli and showed antigen binding activity in several immunoassays without addition of secondary antibody which sometimes causes time-consuming, expensive and non-specific false binding.

Streptavidin이 융합된 DR4 항원에 특이적인 single-chain Fv 항체의 개발

김서우,우상욱,김진규,Kim, Seo Woo,Wu, Sangwook,Kim, Jin-Kyoo 한국미생물학회 2018 미생물학회지 Vol.54 No.4

Streptavidin (STR)과 Biotin system은 Biotin의 Streptavidin에 대한 높은 비공유 친화력(non-covalent affinity; $K_D=10^{-14}M$)과 4 Biotin 결합부위를 갖는 Streptavidin의 tetramer 구조로 인해 복수의 항원결합부위 및 복수의 항원특이성을 갖는 항체를 제조할 수 있기 때문에 가장 활발하게 연구되고 있다. 이 system을 활용하기 위해 우리는 Streptomyces avidinii 염색체 DNA로부터 PCR을 통해 Streptavidin (STR) 유전자를 증폭하고 이를 TRAIL (tumor necrosis factor ${\alpha}$ related apoptosis induced ligand) receptor인 death receptor 4 (DR4)에 특이적으로 결합하는 hAY4 single-chain Fv 항체유전자에 융합시켰다. 대장균에서 발현시킨 STR에 융합된 hAY4 ScFv (hAY4-STR) 항체는 가열시킨 SDS-PAGE에서 43 kDa monomer를 나타내었다. 그러나 가열하지 않은 SDS-PAGE와 Size-exclusion chromatography에서는 tetramer인 172 kDa을 나타내었는데 이는 hAY4 ScFv-STR 항체가 STR의 자연적인 비공유결합에 의해 유도된 tetramer를 형성하고 있음을 나타내고 있다. 본 융합 단백질은 Ouchterlony assay와 ELISA에서 보여주는 것처럼 자연 Streptavidin과 유사한 Biotin 결합력을 유지하고 있었다. ELISA와 Westernblot을 이용하여 정제된 hAY4-STR 융합항체의 DR4 항원결합력 또한 확인하였다. 게다가 표면 플라즈몬 공명(surface plasmon resonance) 분석에서 hAY4 ScFv-STR tetramer는 tetramerization에 의해 hAY4 ScFv monomer보다 60배 더 높은 항원결합력을 나타내었다. 요약하면 hAY4 ScFv-STR 융합단백질은 E. coli에서 soluble tetramer로 성공적으로 발현 및 정제되었으며 Biotin과 DR4 항원에 동시에 결합함을 보여 주었다. 이는 bifunctional and tetrameric ScFv 항체를 제조 할 수 있음을 제시해 주고 있다. The Streptavidin and Biotin system has been studied most extensively as the high affinity non-covalent binding of Biotin to STR ($K_D=10^{-14}M$) and four Biotin binding sites in tetrameric Streptavidin makes this system useful for the production of multivalent antibody. For the application of this system, we cloned Streptavidin amplified from Streptomyces avidinii chromosome by PCR and fused to gene of hAY4 single-chain Fv antibody specific to death receptor 4 (DR4) which is a receptor for tumor necrosis factor ${\alpha}$ related apoptosis induced ligand. The hAY4 single-chain Fv antibody fused to Streptavidin expressed in Escherichia coli showed 43 kDa monomer in heated SDS-PAGE. However, this fusion protein shown in both non-heated SDS-PAGE and Size-exclusion chromatography exhibited 172 kDa as a tetramer suggesting that natural tetramerization of Streptavidin by non-covalent association induced hAY4 single-chain Fv tetramerization. This fusion protein retained a Biotin binding activity similar to natural Streptavidin as shown in Ouchterlony assay and ELISA. Death receptor 4 antigen binding activity of purified hAY4 single-chain Fv fused to Streptavidin was also confirmed by ELISA and Westernblot. In addition, surface plasmon resonance analysis showed 60-fold higher antigen binding affinity of the hAY4-STR than monomeric hAY4 ScFv due to tetramerization. In summary, hAY4 single-chain Fv fused to Streptavidin fusion protein was successfully expressed and purified as a soluble tetramer in E. coli and showed both Biotin and DR4 antigen binding activity suggesting possible production of bifunctional and tetrameric ScFv antibody.

Streptavidin이 융합된 GFP항원 특이적인 VHH 항체의 기능적 발현

한승희(Seung Hee Han),김진규(Jin-Kyoo Kim) 한국생명과학회 2018 생명과학회지 Vol.28 No.12

Biotin에 강한 결합 친화력(KD = 10<SUP>-14</SUP> M)과 함께 streptavidin의 tetramer 특징은 VHH 항체를 streptavidin에 융합시키게 하여 biotinylated horseradish peroxidase를 사용하는ELISA 와Western blot analysis 등의 면역분석법에서 VHH 항체의 항원결합력을 증가시키는데 응용 가능하다. 이를 응용하기 위해 우리는 Streptomyces avidinii 염색체 DNA로부터 PCR을 통해 streptavidin유전자를 증폭하고 이를 green fluorescent protein항원에 특이적으로 결합하는 8B9 VHH 항체유전자에 융합시켰다. 대장균에서 수용성 융합단백질로 발현시키기 위해 pUC119 플라스미드에 기초한 발현시스템을 사용하였다. 즉 lacZ promoter를 사용하여 IPTG에 의해 단백질발현을 유도하게 하였으며, 아미노말단에 pelB leader를 두어 발현된 단백질의 periplasmic space로 이동하게 하여 수용성 단백질형태의 분비를 촉진하였으며 카르복시말단에 6개의 polyhistidine tags를 두어 Ni⁺-NTA-agarose column을 사용하여 발현된 단백질을 정제하였다. Streptavidin이 biotin에 강하게 결합함으로 대장균에 독성을 나타냄에도 불구하고 본 수용성 융합단백질은 성공적으로 발현되었다. SDS-PAGE에서 가열하는 경우 변성되어 30.6 kDa를, 가열하지 않는 경우에는 자연 상태의 122.4 kDa을 나타내었다. 이는 8B9 VHH항체에 융합된 streptavidin moiety에 의해 monomer subunit가 비공유결합으로 tetramerization됨을 제시해준다. 또한 본 융합단백질은 ELISA와 Westernblot analysis에서 보여진 것처럼 parental streptavidin과 유사한 biotin결합력과 green fluorescent protein항원 결합력을 모두 나타내었다. 결론적으로 streptavidin에 융합된 8B9 VHH 항체형태의 융합단백질은 대장균에서 수용성 tetramer로 성공적으로 발현 및 정제되었으며 biotin과 green fluorescent protein 항원에 동시에 결합함으로써 tetrameric and bifunctional VHH 항체제조의 가능성을 제시해주었다. With strong biotin binding affinity (KD = 10<SUP>-14</SUP> M), the tetrameric feature of streptavidin could be used to increase the antigen binding activity of a camel heavy chain (VHH) antibody through their fusion, here stained with biotinylated horseradish peroxidase and subsequent immunoassays ELISA and Western blot analysis. For this application, we cloned the streptavidin gene amplified from the Streptomyces avidinii chromosome by PCR, and this was fused to the gene of the 8B9 VHH antibody which is specific to green fluorescent protein (GFP) antigens. To express a soluble fusion protein in Escherichia coli, we used the pUC119 plasmid-based expression system which uses the lacZ promoter for induction by IPTG, the pelB leader sequence at the N-terminus for secretion into the periplasmic space, and six polyhistidine tags at the C-terminus for purification of the expressed proteins using an Ni⁺-NTA-agarose column. Although streptavidin is toxic to E. coli because of its strong biotin binding property, this soluble fusion protein was expressed successfully. In SDS-PAGE, the size of the purified fusion protein was 122.4 kDa in its native condition and 30.6 kDa once denatured by boiling, suggesting the tetramerization of the monomeric subunit by non-covalent association through the streptavidin moiety fusing to the 8B9 VHH antibody. In addition, this fusion protein showed biotin binding activity similar to streptavidin as well as GFP antigen binding activity through both ELISA and Western blot analysis. In conclusion, the protein resulting from the fusion of an 8B9 VHH antibody with streptavidin was successfully expressed and purified as a soluble tetramer in E. coli; it showed both biotin and GFP antigen binding activity suggesting the possible production of a tetrameric and bifunctional VHH antibody.

증례 : 여러가지 부정맥 치료제에 실패한 Ventricular Tachycardia 에 대한 Practolol 치험 1 예 보고

김종성 ( Jong Seung Kim ),강수철 ( Soo Cheol Kang ),김익모 ( Ik Mo Kim ),김진규 ( Jin Kyoo Kim ),최광웅 ( Kwang Ung Choi ) 대한내과학회 1975 대한내과학회지 Vol.18 No.2

Leucine Zipper Motif를 이용한 닭의 재조합 이량체 Single-chain Fv (ScFv) 항체의 개발

박동운,김언동,김성헌,한재용,김진규,Park, Dong-Woon,Kim, Eon-Dong,Kim, Sung-Heon,Han, Jae-Yong,Kim, Jin-Kyoo 한국미생물학회 2011 미생물학회지 Vol.47 No.4

Leucine zipper motif는 여러 개의 주기적인 leucine 잔기로 구성되어 amphipathic alpha helix형태의 구조를 나타내며 소수성 결합에 의해 이량체를 형성한다. 이 leucine zipper motif를 single chain Fv 항체의 C-terminus에 도입하면 leucine zipper motif의 소수성 결합에 의해 amphipathic alpha helix의 이량체가 형성되면서 융합된 single chain Fv 항체의 이량체 (Dimer) 형성 또한 유도할 수 있다. 이량체 형태의 single chain Fv 항체는 2개의 항원 결합부위를 갖게 되므로 단량체 형태의(monomer) single chain Fv 항체에 비해 항원 결합력(Avidity)이 증가 될 것이다. 이 개념에 기초하여 이전 연구에서 제조된 단량체 형태인 닭 single chain Fv 항체인 8C3 ScFv 항체의 C-terminus에 leucine zipper motif를 도입하여 이량체 형태의 8C3 ScFv 항체를 개발하였다. 이량체 8C3 ScFv 항체는 가금류의 대표적인 기생충 질병인 coccidiosis를 유발하는 Eimerian sporozoite에 특이적으로 결합하는 기능을 나타내었다. 또한 이량체 8C3 ScFv 항체는 avidity 증가로 인하여 단량체에 비해 항원 결합력이 약 3배 증가됨을 확인할 수 있었으며 단백질 회수율 또한 2배 증가되는 부수적인 효과를 얻을 수 있었다. Leucine zipper motif consists of multiple periodic leucine residues, which forms amphipathic alpha helix. The hydrophobic nature of leucine zipper motif can dimerize proteins which contain this motif. Leucine zipper motif addition at C-terminus of single-chain Fv (ScFv) antibody induces its dimerization. Since the dimeric ScFv antibody contains two antigen binding sites (bivalency) like Y-shaped complete antibody, it could increase avidity. As a result, it could show higher antigen binding activity than monomeric ScFv antibodies. Based on this concept, monomeric chicken 8C3 ScFv antibody previously developed from chicken hybridoma was dimerized by the addition of leucine zipper motif at C-terminus of ScFv antibody. The dimeric 8C3 ScFv antibody specifically reacted with Eimerian sporozoite which causes Avian Coccidiosis. As expected, dimeric 8C3 ScFv antibody showed 3-folds higher antigen binding activity than monomer due to increased avidity. In addition, protien yields of dimer expression were 2-folds higher than monomer.

가금 콕시듐증을 일으키는 Eimeria spp.의 포자충 항원에 결합하는 닭의 재조합 항체(ScFv)의 개발

박동운(Dong Woon Park),김언동(Eon Dong Kim),김성헌(Sung Heon Kim),한재용(Jae Yong Han),김진규(Jin-Kyoo Kim) 한국가금학회 2011 韓國家禽學會誌 Vol.38 No.4

인간의 급성 비임파성 백혈암세포(HL60)의 표면항원에 결합하는 재조합 single-chain Fv (ScFv)의 개발

김철홍,한승희,김형민,한재용,임명운,김진규,Kim, Cheol Hong,Han, Seung Hee,Kim, Hyeong Min,Han, Jae Yong,Lim, Myeong Woon,Kim, Jin-Kyoo 한국미생물학회 2015 미생물학회지 Vol.51 No.2

단일클론항체 AP64 IgM은 인간의 급성 비임파성 골수암(ANLL) 세포주 HL60에 결합하며 쥐의 ANLL 세포에도 교차결합(cross-react)한다. 또한 complement에 의해 매개되어지면 골수암 억제효과를 나타낸다. 본 연구에서는 RT-PCR에 의해 AP64 IgM을 분비하는 하이브리도마의 $V_H$ 및 $V_L$ cDNA로부터 유래된 재조합 single-chain variable domain fragment (ScFv)를 제조하였다. $V_H$ 및 $V_L$은 15개 아미노산으로 구성된 linker $(G_4S)_3$으로 연결되었다. 재조합 ScFv는 Escherichia coli BMH 71-18에서 single polypeptide chain으로 발현되었다. Periplasmic extract를 $Ni^+$-NTA-agarose affinity column에 가하여 발현된 재조합 ScFv를 정제하였으며 westernblot으로 정제된 단백질을 탐지하였다. 정제된 재조합 ScFv는 AP64 IgM 모항체가 탐지하는 항원과 같은 HL60 세포의 표면항원(약 30 kDa)을 인지하였다. 그러나 HL60의 표면항원에 대한 ScFv의 결합력은 AP64 IgM 모항체보다 낮아서 추후 이에 대한 개선이 필요하다. 종합하여 볼 때 HL60 세포주에 특이적인 재조합 ScFv는 진단 또는 치료목적으로 유용한 생물학적 제재가 될 수 있을 것이다. A monoclonal antibody AP64 IgM binds to human acute nonlymphocytic leukemia (ANLL) cell line HL60 and also cross-reacts with the homologous antigen in a rat ANLL cell. This antibody mediated by complement, has leukemia a suppression effect. In this study, we generated a recombinant single-chain variable domain fragment (ScFv) which were derived from $V_H$ and $V_L$ cDNA of AP64 IgM-secreting hybridoma by RT-PCR. The two variable regions were joined with a single 15 amino acid linker $(G_4S)_3$. This recombinant ScFv was expressed as a single polypeptide chain from Escherichia coli BMH 71-18. The recombinant ScFv was purified by applying the periplasmic extract to $Ni^+$-NTA-agarose affinity column and detected with westernblot. The purified recombinant ScFv recognized a surface antigen (about 30 kDa) of HL60 cell line which is the same antigen detected by parental AP64 IgM. But the affinity of ScFv for a surface antigen of HL60 was lower than that of the parental AP64 IgM, which needs to be further improved. Overall, the recombinant ScFv specific to HL60 might be a useful bioreagent for either diagnostic or therapeutic purposes.